«ЗЕЛЕНЫЕ ТЕХНОЛОГИИ» ПОЛУЧЕНИЯ СОЕДИНЕНИЙ ГИНЗЕНОЗИДОВ ИЗ ДАЛЬНЕВОСТОЧНОГО ЖЕНЬШЕНЯ (Panax Ginseng) С ПОМОЩЬЮ СВЕРХКРИТИЧЕСКОЙ со₂-экстракции для использования в пищевой, ЛЕКАРСТВЕННОЙ И КОСМЕТИЧЕСКОЙ ПРОМЫШЛЕННОСТИ

В работе впервые была исследована сверхкритическая флюидная СО-экстракция корня дальневосточного дикорастущего женьшеня Panax Ginseng C. A. Meyer при различных температурах и давлениях. После начала экспериментов с переменным давлением, температурой и количеством модификатора было найдено, что использование модификатора давало самый значительный эффект на количество экстрагируемых гинсенозидов. Количество экстрагируемых гинсенозидов было очень небольшим при низком объеме модификатора (1-2 мг/г в количествах модификатора, т. е меньше, чем 1г модификатора / 1г женьшеня), также были изучены более высокие объемы применения модификатора. Используя CO₂+С₂H₅OН как модель, несколько экспериментальных условий были исследованы в диапазоне давлений 200-400 бар, процентах этанола от 3 до 5% в жидкой фазе, при температуре в пределах 40-70⁰C. Была проведена высокоэффективная жидкостная хроматография всех полученных экстрактов и установлено количественное содержание гинзенозидов в полученных аналитах.

углекислый газ, сверхкритическая экстракция, женьшень, высокоэффективная жидкостная хроматография, carbon dioxide, supercritical extraction, ginseng, high-performance liquid chromatography

1. Байг М. Н., Сантос Р., Зецл C., Кинг Д., Пиоч Д., Боура С. Оценка и моделирование полезности SC-CO2 для поддержки эффективной эстерификации, поддержанной липазой. Enzyme Microb. Technol, 2011, 49: 420-26.

2. Брюннер Д. Применение сверхкритических флюидов. Annu. Rev. Chem. Biomol. Eng, 2010, 1: 321-42.

3. Кларк Д. Введение в зеленую технологию. In Alternatives to Conventional Food Processing, ed. A Proctor, pp. 1-10. Cambridge, UK: RSC, 2011.

4. Курт В. А., Гендель Д., Элми Д., ВЭЖХ обратной фазы соединений гинзенозидов Panax quinquefolium. J. Chromatogr. A, 1996, 755: 11-17.

5. Гебхардт С., Билер С., Шуберт-Зилавец М., Рива С., Монти Д., Фалкон Л., Даниели Б., Био-каталитическая генерация молекулярного разнообразия: модификация гинзенозида Rb1 с помощью -1,4-галактозилтрансферазы и липазы Candida antarctica. Helv. Chim. Acta, 2002, 85: 1943-1959.

6. Кинг Д. В. Сверхкритическая флюидная обработка питательно-функциональных липидов. In Healthful Lipids, ed. CC Akoh, O-M Lai, pp. 99-126. Champaign, IL: AOCS Press, 2005.

7. Киттс Д. Д., Ха С. Эффективность и безопасность женьшеня. Public Health Nutr, 2000, 3: 473-485.

8. Квон Д., Белангер Д., Пэйр Д., Алаян В., Применение микроволнового процесса (MAPTM) для быстрой экстракции сапонинов женьшеня. Food Research International, 2003, 36: 491-498.

9. Ланг К., Вай С., Сверхкритическая жидкостная экстракция в исследованиях матриц растительного и природного происхождения - практический обзор. Talanta, 2001, 53: 771-782.

10. Овсянникова O.A., Карпеева Д.В., Осипенко М.Д. Влияние препарата «Этоксидол» на абсолютное количество островков эритроцитов при воздействии диоксидов серы на различные этапы онтогенеза. Кубанский научный медицинский бюллетень, 2017, 1: 99-103.

11. Пандей A., Ларош C., Риске С., Дассап С., Гнансоноу E. Биотопливо - альтернативные исходные материалы и процессы конверсии. Amsterdam: Elsevier, 2011, 629 p.

12. Рен Г., Чен Ф., Деградация гинзенозидов в экстрактах американского женьшеня (Panax quinquefolium) при микроволновом и обычном нагревании. J. Agric. Food Chem, 1999, 47: 1501-1505.

13. Реверчон E., Де Марко И., Сверхкритическая флюидная экстракция и фракционирование природных матриц. The Journal of Supercritical Fluids, 2006, 38: 146-166.

14. Сереваттханавут И., Прапинтип С., Ватхираруджи K., Гото M., Сасаки M., Шотипрак A. Экстракция белка и аминокислот из разведенных рисовых отрубей путем подкритического водного гидролиза. Bioresour. Technol, 2008, 99: 555-561.

15. Сабра П., Кастеллани С., Джестин П., Ауфи A., Экстракция -каротина с помощью сверхкритических флюидов: эксперименты и моделирование. J. Supercrit. Fluids, 1998, 12: 261-269.

16. Тейлор Л. T. Сверхкритическая флюидная экстракция. Торонто: John Wiley & Sons, Inc., 1996, 181 p.

17. Тонтубтимтонг П., Дуглас П.Л., Дуглас С., Лювисаттичат В., Теппайтун В., Пенгсопа Л. Экстракция нимбина из семян нима с использованием сверхкритического СО2 и смеси сверхкритического CO2 + метанол. J. Supercrit. Fluids, 2004, 30: 287-301.

18. Тернер C., Якобсон Д., Алмгрен K., Валдебэк M., Сьёберг П.Л., et al. Субкритическая экстракция воды и катализируемый р-глюкозидазой гидролиз кверцетин-гликозидов в отходах лука. Green Chem, 2006, 8: 949-959.

19. Ванг Л., Веллер С.Л. Недавние успехи в экстракции нутрицевтиков из растений. Trends in Food Science & Technology, 2006, 17: 300-312.

20. Ванг Г., Чен C., Чанг С. Экстракция углекислым газом из корня женьшеня масла и гинзенозидов. Food Chem, 2001, 72: 505-509.

21. Вейднер E. Тонкое измельчение под высоким давлением для применения в пищевой промышленности. J. Supercrit. Fluids, 2009, 47: 556-565.

22. Вуд Д. A., Бернардс M. A, Ванкей W., Карпентер П. A. Экстракция гинзенозидов из американского женьшеня используя модифицированный сверхкритически углекислый газ. J. of Supercritical Fluids, 2006, 39: 40-47.

23. Епез Б., Эспиноза M., Лопез С., Боланос Г. Получение антиоксидантных фракций из растительных матриц используя технологию сверхкритической экстракции. Fluid Phase Equilib, 2002, 194: 879-884.

24. Ео С. Д., Парк С., Ким Д., Ким C. Критические свойства Углекислого газа + Метанол, + Этанол, +1-Пропанол и + 1-Бутанол. J. Chem. Eng, 2000, 45: 932-935.

25. Занкан K. C., Маркес M. O. M., Петенэйт A., Мейрелес M. A. A., Экстракция олеорезина имбиря (Zingiber officinale Roscoe) с CO2 и сорастворителями: исследование антиоксидантного действия экстрактов. J. Supercrit. Fluids, 2002, 24: 57-76.